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一株溶藻弧菌及其应用 专利技术说明

作者:admin      2023-06-29 10:07:01     813



有机化合物处理,合成应用技术1.本发明涉及微生物学技术领域,具体而言,涉及一株溶藻弧菌及其应用。背景技术:2.大型海藻是开发海洋多糖功能食品,寻找新型多糖药物先导化合物的宝贵资源,其蕴藏着多种结构各异的k-卡拉胶多糖。当下k-卡拉胶多糖资源供应缺口大,生产手段落后,而k-卡拉胶多糖存在分子量大、水溶性低、不易被吸收等问题,因此k-卡拉胶多糖仅仅作为原料销至国外或采用简单粗放加工提取k-卡拉胶作为食物或食品添加剂使用。3.相比于k-卡拉胶多糖,k-卡拉胶寡糖不仅来源丰富、种类繁多、性质稳定、应用广泛、活性独特,还具有分子量小、易溶于水、无抗原性等显著优势,具有多种医药保健功效,如抗病毒、抗氧化、抗凝血、免疫调节等功能。4.制备k-卡拉胶寡糖的常见方法主要有化学法和物理法,但是现有方法存在破坏多糖的结构以及产生有害副产物等缺点。技术实现要素:5.本发明提供一株溶藻弧菌及其应用,用以克服现有技术中存在的至少一个技术问题。6.有鉴于此,本发明提供了一株溶藻弧菌及其应用,该菌株能够将k-卡拉胶降解为k-卡拉胶寡糖,降解率大于80%,获得的k-卡拉胶寡糖具有显著的抗氧化作用。7.本发明从大型海藻江蓠中分离获得菌株k-z8,该菌株为革兰氏阴性杆菌,菌落湿润、淡黄色、圆形,边缘整齐,好氧菌,可降解k-卡拉胶并在固体培养基上有水解圈,并随着时间的增加水解圈直径不断扩大。该菌株的16s rrna基因的核苷酸序列如seq id no:1所示。经形态学和16s rrna基因鉴定为溶藻弧菌(vibrio alginolyticus),其保藏编号为cgmcc no.24569。8.本发明还提供了所述溶藻弧菌在制备k-卡拉胶寡糖中的应用。9.本发明还提供一种制备k-卡拉胶寡糖的方法,由本发明所述的溶藻弧菌k-z8降解k-卡拉胶制得。10.一些实施方案中,本发明提供的制备k-卡拉胶寡糖的方法具体包括:11.步骤(1):将保藏编号为cgmcc no.24569的溶藻弧菌接种至种子培养基中,培养,获得种子液;12.步骤(2):将所述种子液接种于含k-卡拉胶的液体培养基中,培养,离心去除菌体,得到上清液;13.步骤(3):将所述上清液经分子截留、离心,收集分子量3~10kda的组分。14.一些实施方案中,步骤(1)中所述溶藻弧菌k-z8的接种量为1~2%(v/v);一些具体实施例中,所述接种量具体可为2%(v/v)。15.一些实施方案中,所述培养的条件为:转速为160~180rpm,25~30℃下,培养12~15h;一些具体实施例中,所述培养的条件为:转速为180rpm,30℃下,培养15h。16.一些具体实施例中,步骤(2)中,所述含k-卡拉胶的液体培养基包括如下质量体积百分数的组分:17.0.15%k-卡拉胶、3%nacl、0.5%(nh4)2so4、0.26%k2hpo4·3h2o、0.1%mgso4·7h2o、0.01%feso4·7h2o,ph为7.5。18.一些实施方案中,步骤(2)中所述种子液的接种量为1~2%(v/v);一些具体实施例中,所述接种量具体可为2%(v/v)。19.一些实施方案中,步骤(2)中所述培养的条件为:转速为160~180rpm,25~30℃下,培养45~60h;一些具体实施例中,所述培养的条件为:转速为180rpm,30℃下,培养45h。20.本发明还提供了由本发明所述的方法制得的k-卡拉胶寡糖。21.本发明研究了由本发明所述的方法制得的k-卡拉胶寡糖(即分子量3~10kda的粗k-卡拉胶寡糖)的抗氧化特性,发现其在ph 6.5~7.5的dpph清除率为>75%,在温度30~35℃的dpph清除率为>80%,具有显著的抗氧化作用。22.基于以上效果,本发明还提供了所述的k-卡拉胶寡糖在制备抗氧化产品中的应用。23.本发明从大型海藻江蓠中分离一株溶藻弧菌(vibrio alginolyticus)k-z8,于2022年3月23日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为cgmcc no.24569。该菌株能够将k-卡拉胶充分地降解为分子量3~10kda的k-卡拉胶寡糖,所获得的k-卡拉胶寡糖具有显著的抗氧化作用.24.生物保藏说明25.k-z8,分类命名:溶藻弧菌vibrio alginolyticus,于2022年3月23日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,保藏编号为cgmcc no.24569。附图说明26.为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。27.图1为菌株形态图;28.图2为菌株扫描电镜图;29.图3为不同时间段菌株降解琼胶的水解圈变化;30.图4为菌株k-z8系统进化树图;31.图5为3~10kda的λ-卡拉胶寡糖的抗氧化性;32.图6为温度对k-卡拉胶寡糖的抗氧化性的影响;33.图7为ph对k-卡拉胶寡糖的抗氧化性的影响;34.图8为不同时间段发酵液中的3~10kda的k-卡拉胶寡糖的抗氧化性。具体实施方式35.本发明公开了一株需钠弧菌及其应用,本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。36.下面结合实施例,进一步阐述本发明:37.实施例1溶藻弧菌(vibrio alginolyticus)k-z8的筛选与鉴定38.1.1培养基39.(1)k-卡拉胶液体培养基中各组分的质量体积百分含量为0.15%k-卡拉胶、3%nacl、0.5%(nh4)2so4、0.26%k2hpo4·3h2o、0.1%mgso4·7h2o、0.01%feso4·7h2o,ph为7.5。40.(2)k-卡拉胶固体培养基中各组分的质量体积百分含量为:1.5%琼胶、2%k-卡拉胶、3%nacl、0.5%(nh4)2so4、0.26%k2hpo4·3h2o、0.1%mgso4·7h2o、0.01%feso4·7h2o,ph为7.5。41.1.2菌株筛选42.1.2.1样品采集:采集海南近海大型海藻江蓠,取5g样品,加入50ml pbs缓冲液,于无菌研磨器中研磨后倒入100ml ep管,上下轻晃,静置10min之后备用。43.1.2.2菌株k-z8的初筛:取10μl处理好的江蓠样品接种至以k-卡拉胶为唯一碳源的液体培养基进行发酵培养,在30℃、180rpm的条件下培养24h,并且3次传代。44.1.2.3菌株k-z8的复筛:取3μl传代后的发酵液涂布至k-卡拉胶固体培养基上,待长出菌落后进行多次划线,直至分离出单菌落(图1)。45.1.3菌株k-z8的形态特征46.菌株k-z8为革兰氏阴性菌,且为杆菌,菌落湿润、淡黄色、圆形,边缘整齐,好氧菌,可降解λ-卡拉胶并在固体培养基上有水解圈(图1-2),并随着时间的增加水解圈直径不断扩大(5%卢戈碘液染色)(图4)。47.1.4菌株k-z8的分子生物学鉴定48.将k-z8提取基因组后,进行16s rdna测序以及鉴定,该菌株鉴定为需钠弧菌(vibrio natriegens),我们将其命名为溶藻弧菌(vibrio alginolyticus)k-z8(图4)。49.16s rrna全基因序列长1351bp,序列如seq id no:1所示。50.1.5菌株k-z8制备k-卡拉胶寡糖的方法51.(1)将需钠弧菌k-z8以2%(v/v)的接种量接种到2216e种子培养基中,转数180rpm,装液量20%,30℃培养12h得到种子液。52.(2)将种子液以2%的接种量接种于k-卡拉胶液体培养基中(制备k-卡拉胶寡糖的培养基为k-卡拉胶固体培养基:1.5%琼胶、2%k-卡拉胶、3%nacl、0.5%(nh4)2so4、0.26%k2hpo4·3h2o、0.1%mgso4·7h2o、0.01%feso4·7h2o,ph为7.5。160rpm,30℃培养45h,获得发酵液,经离心去除菌体,得到上清液;53.(3)上清液通过分子截留的方法,使用ultra离心管获得分子量3~10kda的粗λ-卡拉胶寡糖。54.1.6k-z8k-卡拉胶寡糖抗氧化特征55.1.6.13~10kda k-卡拉胶寡糖的抗氧化性56.k-卡拉胶寡糖的抗氧化特性使用dpph自由基清除法进行评估。使用无水乙醇配制0.1mm dpph溶液。首先考察了3~10kda的k-卡拉胶寡糖的抗氧化特性,将50μl dpph溶液与150μl的3~10kda的k-卡拉胶寡糖液混合(ph 7.0),25℃下避光孵育60min后,在517nm处测量反应液的吸光度,并以无水乙醇代替样品作为阴性对照,计算3~10kda的k-卡拉胶寡糖的抗氧化效率。结果发现,分子截留后的3~10kda的k-卡拉胶寡糖的dpph清除率为82%,相比于1.5小节步骤(2)相同体积的发酵液提高了近53%,表现出较强的抗氧化特性(图5)。57.1.6.2温度对k-卡拉胶寡糖的抗氧化的影响58.将50μl dpph溶液与150μl的3~10kda的k-卡拉胶寡糖液混合(ph 7.0),不同温度下避光孵育60min后,在517nm处测量反应液的吸光度,并以无水乙醇代替样品作为阴性对照,考察3~10kda的k-卡拉胶寡糖在不同温度下的抗氧化效率,结果显示,温度范围在30~35℃的dpph清除率为最佳且均>80%(图6-7)。59.1.6.3ph对k-卡拉胶寡糖的抗氧化的影响60.首先调节3~10kda的k-卡拉胶寡糖液的ph为5~11。随后,将50μl dpph溶液与150μl的3~10kda的k-卡拉胶寡糖液混合,在30℃下避光孵育60min后,在517nm处测量反应液的吸光度,并以无水乙醇代替样品作为阴性对照,考察3~10kda的k-卡拉胶寡糖在不同温度下的抗氧化效率,结果显示,ph范围在6~7.5的dpph清除率最佳且均>80%。61.1.6.4不同时间段发酵液中的3~10kda的k-卡拉胶寡糖的抗氧化性62.选取不同发酵阶段的发酵液,离心去除菌体,得到上清液。上清液通过分子截留的方法,获得不同发酵阶段的分子量为3~10kda的粗k-卡拉胶寡糖。将50μl dpph溶液与150μl的各时间段的3~10kda的k-卡拉胶寡糖液混合(ph 7.0),30℃下避光孵育60min后,在517nm处测量反应液的吸光度,并以无水乙醇代替样品作为阴性对照,考察不同时间段发酵液中3~10kda k-卡拉胶寡糖的抗氧化效率,结果显示,发酵45h后的发酵液中的3~10kda k-卡拉胶寡糖液dpph清除率达到最佳约为82%,随后进入平台期(45~80h),平台期过后发酵液中的3~10kda k-卡拉胶寡糖对dpph清除率逐渐下降(图8)。63.以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。









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