有机化合物处理,合成应用技术末端位于菲牛蛭与日本医蛭、宽体金线蛭、天目山蛭的差异区域,tm值为55~65℃,预期扩增长度为251bp,得到所述特异性引物。10.一种用于鉴定菲牛蛭的pcr方法,包括上述的上游引物l315和下游引物h566。11.优选的是,pcr反应体系为:takara premix ex taq 12.5μl,上游引物l315、下游引物h566各1μl,并使引物终浓度为0.4μm,dna模板1μl,加无菌双蒸水至25μl;12.pcr扩增程序为:94℃预变性1min,94℃变性30s,52℃退火30s,28个循环。13.优选的是,在pcr扩增产物中加入sybr green i于365nm紫外波长下检测荧光,产生强烈绿色荧光的为菲牛蛭。14.本发明至少包括以下有益效果:15.第一、本发明针对现有pcr技术在菲牛蛭鉴别应用中的不足,以菲牛蛭及其他物种在co1序列具有稳定差异的snp位点为基础设计了菲牛蛭的特异性引物,并利用快速pcr建立了菲牛蛭区别于其他蛭类的鉴定方法。16.第二、本发明的创造性的结合了快速pcr技术对菲牛蛭进行鉴定,采用碱裂解法提取dna,其较一般提取方法操作更为简便和快速,优化的pcr反应参数较一般的分子鉴定方法也耗时更短。17.第三、本发明引入荧光染料对扩增产物进行检测,可达到快速鉴别目的。样品不需要经过测序等方法,只需根据紫外灯下荧光检测结果即可完成菲牛蛭的鉴定,也适用于快速鉴定大批量样品,较大提高了鉴别效率,解决菲牛蛭市场掺伪的问题,对于保证菲牛蛭临床用药安全和疗效、规范菲牛蛭市场秩序具有重要意义。18.本发明的其它优点、目标和特征将部分通过下面的说明体现,部分还将通过对本发明的研究和实践而为本领域的技术人员所理解。附图说明19.图1为co1通用引物pcr扩增产物电泳结果,其中,m为d2000 dna marker;w为空白对照;1~10为菲牛蛭(鲜品);11~13为菲牛蛭(药材);14~19为宽体金线蛭(药材);20~28为宽体金线蛭(鲜品);29~37为日本医蛭(鲜品);38~43为天目山蛭(鲜品);20.图2为特异性引物pcr扩增产物电泳结果,其中,注:m为d2000 dna marker;w为空白对照;1~10为菲牛蛭(鲜品);11~13为菲牛蛭(药材);14~19为宽体金线蛭(药材);20~28为宽体金线蛭(鲜品);29~37为日本医蛭(鲜品);38~43为天目山蛭(鲜品);21.图3为快速pcr扩增产物的荧光检测结果图。具体实施方式22.下面结合附图对本发明做进一步的详细说明,以令本领域技术人员参照说明书文字能够据以实施。23.应当理解,本文所使用的诸如“具有”、“包含”以及“包括”术语并不排除一个或多个其它元件或其组合的存在或添加。24.需要说明的是,下述实施方案中所述实验方法,如无特殊说明,均为常规方法,所述试剂和材料,如无特殊说明,均可从商业途径获得。25.实施例1、基因组dna提取及检测26.一、溶液的配置27.溶液a:用量筒量取97ml灭菌水于烧杯中,再用移液器吸取曲拉通100(纯度为98%)1ml,搅拌溶解。28.溶液b:取氢氧化钠固体0.8g于一小烧杯中,加入20ml灭菌水。称取tris-hcl固体7.88g,于另一小烧杯中,先加入约40ml的灭菌水,后续少量多次加入适量的氢氧化钠溶液和灭菌水,调节至溶液的总体积为50ml,ph=8。得到50ml 1m的tris-hcl溶液(ph=8),取该溶液10ml于玻璃瓶中,量筒量取90ml灭菌水,稀释得到0.1m的tris-hcl溶液(ph=8),待用。29.试剂c:分别取0.5g氢氧化钠、0.25g聚乙烯吡咯烷酮至烧杯中,溶于溶液a(25ml)中,配成dna提取缓冲液,轻微摇晃振荡,完全溶解后待用。30.二、基因组总dna的提取31.使用75%酒精擦拭样品(样品来源如表1所示)表面,晾干。取样品肌肉组织约30mg,鲜品样品用手术剪剪碎,灭菌水洗净,药材剪成小碎块。放入2ml编号管中。使用75%酒精对磁珠进行灭菌,每个编号管分别加入灭菌后干燥的磁珠,dna提取研磨仪研碎,得到研磨样品。32.使用时向研磨样品中加入200μldna提取缓冲液,涡旋振荡充分混匀;加入800μl溶液b,涡旋振荡充分混匀,12000rpm离心1min;取500μl上清液至新的2ml离心管内,分别加入500μl溶液b,涡旋振荡混匀;-20℃保存备用。33.表1样品来源[0034][0035]三、pcr扩增目的基因[0036]使用co1通用引物(lco1490:5′‑ggtcaacaaatcataaagatattgg-3′、hco2198:5′‑taaacttcagggtgaccaaaaaatca-3′)对所上述提取的dna样品进行pcr扩增,扩增条件如表2所示。[0037]表2引物及pcr反应条件[0038][0039]四、pcr扩增产物检测[0040]配置浓度为1%琼脂糖凝胶,即称取1g琼脂糖于锥形瓶中,加入100ml 1×tae缓冲溶液放入微波炉加热3min,移液器吸取1μl核酸染料,加入溶解的凝胶溶液中,并充分混匀倒入制胶板中,30min后凝胶成形,放置于电泳仪上,加入1×tae电泳缓冲液浸泡过琼脂糖凝胶。[0041]取3μl扩增好dna样品和2μl 6×loading buffer充分混匀后,每孔5μl点样到点样孔中,并在样品两侧点入5μl d2000 dna marker和空白对照。上样完毕后,设置电压135v运行30~40min。[0042]电泳结束取出凝胶放置于syngene凝胶成像系统观察、拍照,检测所提dna的质量。凝胶电泳检测结果见图1。琼脂糖凝胶电泳图结果显示所提取的dna样品均能扩增目的片段,获得约700bp dna条带,表明采用碱裂解法提取样品所得的dna是有效的,可以满足后续的实验研究。[0043]实施例2、特异性引物设计与合成[0044]一、序列比对[0045]从ncbi数据库(national center for biotechnology information)中下载菲牛蛭、日本医蛭、宽体金线蛭、天目山蛭的coi序列,下载的序列一起利用bioedit软件进行多重序列比对,找出具有稳定差异的变异位点,选择菲牛蛭与其他蛭种差异大的区域进行引物设计。[0046]二、引物设计[0047]使用引物设计软件premier primer 5.0设计特异性引物,调整参数使引物的3'末端位于菲牛蛭与其他蛭种差异区域,tm值为55~65℃,预期扩增长度为251bp。最终确定引物(l315:5’‑tgttggtacaggatgaacta-3’,h566:5’‑gctgctgctaatactggta-3’),所设计的引物由南宁捷尼斯生物科技有限公司合成。[0048]实施例3、pcr扩展条件优化[0049]以菲牛蛭及其他蛭类样品的基因组dna为模板,特异性鉴别引物l315、h566进行快速pcr扩增反应条件优化,分别考察退火温度、循环次数、退火时间、引物终浓度、模板体积以及不同dna酶种类、不同型号pcr扩增仪对pcr反应稳定性的影响。具体影响因素见表3。[0050]表3pcr反应因素考察表[0051][0052]一、退火温度[0053]影响特异性快速pcr反应的关键因素有很多,首先考察了退火温度,分别考察了45℃,52℃,58℃和65℃。结果显示,当退火温度为45℃时,除菲牛蛭药材有目的条带出现外,其他蛭类物种无目的条带存在,但总体条带有些淡;当退火温度为52℃时,菲牛蛭样品在约251bp处有一清晰明亮的目的条带,其他蛭类样品未检测出目的条带;当退火温度设置为58℃时,菲牛蛭样品有明亮目的条带,但其中有1个样品无目的条带存在,其他蛭类样品未检测出目的条带;当退火温度设置为65℃时,菲牛蛭和其他蛭类样品均无目的条带存在。荧光检测结果与电泳结果一致。可见,在四个退火温度中,只有45℃和52℃能完全扩增出目的条带,且52℃较45℃出现的目的条带亮度更强,因此,最终选择退火温度为52℃。[0054]二、循环次数[0055]循环次数分别设置为20次、28次、31次和35次考察特异性快速pcr反应条件。结果显示,当循环次数为20次时,所有菲牛蛭样品有目的条带出现,但比较浅,荧光不明显,其他蛭类样品条带均不出;当循环次数为28次时,菲牛蛭样品均有明亮的目的条带,荧光明显,其他蛭类样品条带均不出;分别设置循环次数为31和35次时,菲牛蛭样品虽有明亮的目的条带,但偶有条带比较浅。荧光检测结果与电泳结果一致。可见,在四个循环次数中,虽然菲牛蛭样品均能出现目的条带,由于循环次数越多,pcr反应所需时间越长,四个循环次数(20次、28次、31次和35次)所用时长分别为:43分钟、55分钟、65分钟、74分钟,因此,兼顾pcr扩增效率,最终选择循环次数为28次。[0056]三、退火时间[0057]退火时间分别设置为5s,10s,20s和30s。结果显示,当退火时间为5s时,菲牛蛭样品的目的条带总体都较浅,其中有1个样品无目的条带,其他蛭类样品均无目的条带;当退火时间为10s时,菲牛蛭样品的目的条带也较浅,其中有1个样品无目的条带,三个样品条带极浅,其他蛭类样品均无目的条带;当退火时间为20s时,菲牛蛭样品的目的条带明亮,但其中有三个样品目的条带极浅,其他蛭类样品均无目的条带;当退火时间为30s时,菲牛蛭样品均有明亮的目的条带,荧光明显,其他蛭类样品条带均不出。因此,最终选择退火时间选择为30s。[0058]四、引物终浓度[0059]引物终浓度分别考察了0.1μm,0.2μm,0.4μm,0.6μm。结果显示,当引物最终浓度为0.1μm,0.2μm和0.6μm时,有部分菲牛蛭药材样品无目的条带;当引物最终浓度为0.4μm时,菲牛蛭药材样品均检测出明亮的目的条带,其他蛭类物种条带均不出。荧光检测结果与电泳结果一致,浓度为0.4μm时荧光最明显。因此,最终选择引物终浓度为0.4μm用于菲牛蛭快速pcr法鉴别。[0060]五、模板体积[0061]模板体积分别考察了0.5μl,1μl,3μl,6μl。结果显示,当模板体积分别为0.5μl,3μl,6μl时,菲牛蛭样品的目的条带总体均较浅,其他蛭类样品无目的条带,其中模板体积为3μl时,菲牛蛭样品中有1个样品不出条带,模板体积为6μl时,菲牛蛭样品中有6个样品不出条带,只有当模板体积为1μl时,菲牛蛭样品均检测出明亮的目的条带,其他物蛭类样品条带均不出。荧光检测结果与电泳结果一致。因此,最终选择模板体积为1μl选用于菲牛蛭快速pcr法鉴别。[0062]六、dna酶种类[0063]dna酶种类分别考察了takara taq酶、takara ex taq酶和天根taq酶,琼脂糖凝胶电泳检测结果图表明,当使用天根taq酶时,仅有一个菲牛蛭样品产生目的条带,菲牛蛭其他样品及其他蛭类样品均无目的条带。当使用takara taq酶时,部分菲牛蛭样品未能扩增出目的条带;当使用takara ex taq酶时,菲牛蛭样品均检测出明亮的目的条带,其他蛭类样品条带均不出。因此,最终选择takara ex taq酶用于菲牛蛭快速pcr法鉴别。[0064]七、pcr扩增仪[0065]pcr扩增仪考察了美国伯乐(bio-rad)t100 pcr仪、德国耶拿(biometra)型pcr仪和瑞士罗氏(roche)lightcyclerpcr仪,琼脂糖凝胶电泳结果表明,三种pcr扩增仪均能把菲牛蛭样品扩增出目的条带,且差别不大,其他蛭类样品均未能扩增出目的条带,荧光检测结果与电泳结果一致,表明pcr反应条件在不同厂家型号的pcr扩增仪的扩增的结果具有稳定性。[0066]综合以上实验结果,最终确定菲牛蛭快速pcr鉴别方法为:pcr扩增反应体系为25μl,包括takara premix ex taq 12.5μl,上游引物、下游引物各1μl(引物最终浓度为0.4μm),dna模板1μl,加无菌双蒸水至25μl。pcr扩增程序为94℃预变性1min,94℃变性30s,52℃复性30s,28次循环。以1%琼脂糖凝胶电泳检测pcr扩增产物,所有菲牛蛭样品在251bp附近有一清晰特异性条带,而其他蛭类样品无条带。在扩增产物加入2μl100×sybr green i染料,菲牛蛭样品显示出明亮绿色荧光,而其他蛭类样品不显示荧光。[0067]实施例4、菲牛蛭的pcr鉴定[0068]采用碱裂解法提取样品所得的dna,选择优化的pcr反应参数对菲牛蛭样品及其混伪品进行扩增,琼脂糖凝胶电泳结果表明,菲牛蛭样品均能获得有效扩增,在251bp处有一清晰条带,如图2所示;在pcr扩增产物中加入2μl 100×sybr green i于365nm紫外波长下检测荧光,菲牛蛭样品均产生强烈绿色荧光,而其他样品无荧光,结果见图3。与凝胶电泳结果一致,鉴别结果准确。[0069]本发明的快速pcr鉴别方法,提取基因组dna时间少于10分钟,pcr扩增约50分钟,整个菲牛蛭的分子鉴别操作可在1小时内完成。[0070]采用普通的pcr鉴别方法,如申请号cn201810824002.0提供的方法,提取基因组dna至少需要3小时,pcr扩增至少需要2.5小时,琼脂糖凝胶电泳需要30分钟,整个菲牛蛭的分子鉴别操作至少需要6小时。可见,本发明方法的鉴别效率大大提高。[0071]尽管本发明的实施方案已公开如上,但其并不仅仅限于说明书和实施方式中所列运用,它完全可以被适用于各种适合本发明的领域,对于熟悉本领域的人员而言,可容易地实现另外的修改,因此在不背离权利要求及等同范围所限定的一般概念下,本发明并不限于特定的细节和这里示出与描述的图例。
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用于鉴定菲牛蛭的特异性引物及快速PCR方法 专利技术说明
作者:admin
2023-06-29 23:06:13
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